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高通量测序产品技术咨询FAQ

Q:如何从磁珠的外观区分磁珠是否正常?

正常磁珠在静置状态下,微珠会与缓冲液(buffer)自然分层并聚集于瓶身底部;使用前需进行震荡混匀操作,使微珠均匀分散在缓冲液中。若磁珠出现以下非正常状态,可能表明其均一性受影响:(1)磁珠粘稠度异常升高,无法通过常规震荡充分分散;(2)磁珠聚集成块,肉眼可见明显的块状聚集物;(3)磁珠出现挂壁现象…

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Q:磁珠沉淀可能是什么原因?

磁珠沉淀异常可能由以下原因导致:(1)样本问题:样本中含高浓度糖类或蛋白质,可能影响磁珠与目标物质的结合效率;或样本buffer与磁珠buffer的成分存在冲突,干扰磁珠的分散性和吸附性能。(2)磁珠问题:磁珠 buffer 被污染,可能引入杂质影响磁珠的正常功能。(3)操作问题:干燥时间过长(一般…

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Q:可以用DNA纯化磁珠代替RNA纯化磁珠吗?

不建议使用DNA纯化磁珠代替RNA纯化磁珠。原因如下:(1)RNA分子结构相对脆弱,对环境因素(如温度、pH、酶污染等)更为敏感,DNA纯化磁珠的体系设计通常更侧重于DNA的吸附与洗脱,可能无法有效维持RNA的结构稳定性,增加RNA降解风险;(2)RNA纯化磁珠的优化体系(如特定的裂解缓冲液、盐浓度…

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Q:磁珠未开封的时候 4℃保存,开封后一直室温保存使用,是否会影响磁珠的回收性能?

磁珠未开封时建议4℃保存,开封后若长期室温放置可能会影响其回收性能,因此不建议室温长时间放置。使用完毕后,建议立即将磁珠重新密封并放回4℃环境保存。PEG(聚乙二醇)的分离效果易受pH值、温度等因素影响,操作时需注意控制相关条件以确保实验结果的稳定性。

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Q:12600ES/12601ES 磁珠回收率低可能的原因是什么?

磁珠回收率低可能的原因及对应建议如下:(1)磁珠与待处理物质(如DNA )混匀不充分,导致磁珠未能充分吸附目标物质。建议在反应体系中充分混匀磁珠与待处理物质,确保充分接触。(2)磁珠比例设置不当。请严格按照产品说明书推荐的比例选择磁珠用量,以保证最佳吸附效果。(3)孵育时间不足。为确保磁珠与目标物质…

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Q:12600ES/12601ES 不小心将磁珠放到-20℃,但未结冰,是否可以继续使用?

若磁珠仅短暂放置于-20℃且未结冰(即未发生冻结),通常不影响其后续使用。但需注意:(1)若磁珠长时间处于低温环境(如过夜或更长时间),可能导致其结构稳定性下降,进而影响分选或纯化性能;(2)建议在使用前对磁珠进行一次短时间的室温平衡,以确保其充分恢复活性。实际使用效果可能因具体产品特性及实验条件存…

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Q:接头中 index/Barcode 组合原则是什么?

接头中 index/Barcode 的组合原则主要包括以下两点:(1)碱基平衡:确保接头序列中 A、T、C、G 四种碱基的含量相对均衡,以避免因碱基组成差异导致的扩增偏差或测序信号异常;(2)荧光平衡:对于带有荧光标记的 index/Barcode,需保证不同 index/Barcode 组合的荧光…

接头系列 👁 82 🔖 13361ES, 分子类, NGS, 接头
Q:双端接头,连接过程的注意事项,长接头和短接头有区别吗?

双端接头连接过程的注意事项如下:(1)接头连接时,需确保反应体系中DNA片段、接头及连接酶(如T4 DNA Ligase)的比例合适,且避免过度连接导致的非特异性产物。(2)长接头与短接头的区别主要在于序列组成:长接头(如带完整Index序列的接头)可直接完成文库构建,若样本投入量多(一般需要2μg…

接头系列 👁 112 🔖 13361ES, 分子类, NGS, 接头
Q:Set 1 和Set 2 有什么区别?如何选择?

Set 1 和 Set 2 均包含 96 种不同的引物组合,两者合并后可覆盖 384 种引物组合。推荐原则如下:(1)若客户单次上机检测样本数量低于 96 个,可根据实际实验需求选择 Set 1 或 Set 2 中的任意一组进行使用;(2)若客户实验需检测 96 个以上样本,建议同时使用 Set 1…

接头系列 👁 81 🔖 12415ES, 分子类, NGS, 接头
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