不可以的，这款产品的适用方向是常规基因表达定量（mRNA/gDNA/质粒模板），未针对非编码 RNA 的特殊结构做引物体系和扩增策略优化。
qPCR系列FAQ
有影响，预变性时间较长可能会影响酶的活性，导致 PCR 产物的产量有所降低。
里面预混的ROX浓度不同，需要根据仪器的型号进行对应选择。
有影响，预变性时间较长可能会影响酶的活性，导致 PCR 产物的产量有所降低。Q：qPCR 实验结果的有效性？为什么建议Ct 值要大于 15？有效性要满足三个条件：（1）标准曲线：扩增效率范围:90-110%，对应斜率为 -3--3.5。 R2＞0.98。 (扩增效率=10-1/斜率-1)，当斜率=…
有影响，预变性时间较长可能会影响酶的活性，导致 PCR 产物的产量有所降低。
酶不一样，11208 是可以做多重PCR，11205 只能做单重PCR，做qPCR 是没有问题的。
可以，但一般推荐 20ul。大体系减少误差。5μl 体系太小，加样误差会很大，不推荐。
建议在 300bp 以下，过长的产物会导致酶效降低。若一定要用，建议用三步法。
试剂中本身含有稳定性成分，本身不参与任何反应，稳定剂成分在电泳胶上面会表现出弥散状，不建议跑完后再电泳。
可以先混合大体系，再分别加到离心管里面，最后加模板；枪头加样不要把空气打进去，二档吸样，一档打样品；缓慢推出液体，不要吹打；沿着壁打入到孔内；另外配置完后，如果还有气泡，离心PCR管去除。如果是96孔板，移液完后轻轻敲96孔板。
沉淀是稳定剂冻存后溶解度下降析出形成的，不影响产品性能。建议解冻后上下颠倒，枪头吹打混匀至沉淀消失。若仍未溶解，可离心后取液体，请避免取到该沉淀。
试剂中本身含有稳定性成分，本身不参与任何反应，稳定剂成分在电泳胶上面会表现出弥散状，不建议跑完后再电泳。
可以先混合大体系，再分别加到离心管里面，最后加模板；枪头加样不要把空气打进去，二档吸样，一档打样品；缓慢推出液体，不要吹打；沿着壁打入到孔内；另外配置完后，如果还有气泡，离心PCR管去除。如果是96孔板，移液完后轻轻敲96孔板。
沉淀是稳定剂冻存后溶解度下降析出形成的，不影响产品性能。建议解冻后上下颠倒，枪头吹打混匀至沉淀消失。若仍未溶解，可离心后取液体，请避免取到该沉淀。
11185特异性更好，灵敏度更高，平台期荧光信号值更高。
(1)X 表示模板 DNA 量需要实验者在首次实验时进行摸索。首先对模板DNA 进行稀释（一般推荐 5-10 倍），然后模板量梯度上样，选择 CT 值落在 20-30 之间的最佳上样量。(2)常用的量是逆转录 500-1000ng 总RNA，稀释 10 倍取 1μL cDNA 进行qPCR 实验…
(1)有效性要满足三个条件：（1）标准曲线：扩增效率范围:90-110%，对应斜率为-3--3.5。R2＞0.98。 (扩增效率=10-1/斜率-1)，当斜率=-3.32 时，扩增效率=100%。（2）扩增曲线：S 型曲线，且 Ct 值在 15－35 之间，阴性对照 Ct＞35 或无Ct 值。（3）…
可能原因：a）RNA 纯度低，体系中存在较多杂质；推荐参数：OD260/OD280=1.8-2.0， OD260/OD230＞2.0。随着 qPCR 反应的进行，阻碍反应的因素不断增加，若 RNA 纯度低，杂质多，会进一步影响仪器平台期的算法，导致出现锯齿状。b）仪器长时间未做校准。仪器未校准会使仪…
可能原因：a）模板量太低（CT 值 35 左右）。推荐 Ct 值：15＜Ct＜30。原因：Ct 值太大（如 Ct＞30），刚进入指数扩增期几个循环就停止了反应，故无法到达平台期。 b）循环次数太少（30 cycles）；循环次数过少（如 35）导致刚进入指数扩增期几个循环就停止了反应，故无法到达平…
较低峰 Tm 在 80℃之前可能原因：存在引物二聚体（一般mRNA 反转录后定量，产物在 100-150bp 左右，峰对应 Tm 值为 80-90℃。若有引物二聚体存在，引物二聚体大小只有几十bp，峰对应 Tm 值在 70-80℃之间。故会在 80℃以前出现一个峰， 80℃以后出现一个峰），模板浓度…