实验中发现未经诱导凋亡的对照细胞经染色后Annexin V-PE/7-AAD 双阳性比例过高，造成这种结果的原因可能是细胞本身活力低。建议用台盼蓝染色计算细胞活力，阴性对照台盼蓝拒染的细胞应大于 95%。若细胞活力低，建议重新复苏细胞，通常刚复苏的细胞至少应传代 2-3 次以后才能进行实验。另一可能…
细胞分析FAQ
可以不调补偿，通道选择如下：用488nm激发的FITC通道；7-AAD使用561nm激发的PerCP‑Cy5.5或PC5.5通道。
做肝脏巨噬细胞清除，需要做灌流。流式建议检测F4/80和CD11b。推荐尾静脉注射，24h后取肝脏，做免疫组化。免疫组化不用灌流。
这款试剂是多室脂质体。
该清除剂的Clodronate的浓度是5mg/mL。
不同批次会有差异，整体粒径＜10μm，平均粒径为5-6μm。
收到氯磷酸脂质体后，如果不能马上使用，需放置在 4℃冰箱。禁止冻存！使用时作为原液使用，不能进行稀释。脂质体很容易发生沉淀，建议使用之前轻轻混匀，另外 4℃的氯磷酸脂质体不能马上使用，需要恢复到室温才能进行注射。
可以用于体外巨噬细胞的清除。
一方面有可能是动物注射了不均一的脂质体悬液。建议在使用之前轻轻摇晃混匀。脂质体在体外一段时间后会发生沉降。如果在很长一段时间内需要一次注射多只动物，那么脂质体便会在注射器中发生沉淀，形成不均一悬液，这样一来，第一只注射的计量与最后一只注射的计量就会发生明显的变化。另外一方面有可能是脂质体刚从冰箱取出…
这个要涉及到具体的实验方案设计，建议客户自行设计实验方案，可以寻找符合的文献进行参考，另外翌圣官网的产品应用中提供有部分参考文献。
这个可能是操作过程中受到细菌的污染，体内清除巨噬细胞后会增加例如病毒粒子、细菌或者酵母感染的几率。
大鼠中成熟的巨噬细胞呈现 ED1 和 ED2 双阳性，但是有一些没有吞噬功能的或者吞噬作用小的前体细胞也是 ED1+，但是呈现 ED2-。因此，所有 ED2+的细胞都可以被完全清除，但是 ED1+的细胞却只能被部分清除，清除的比率取决于前体/成熟巨噬细胞的比例。
Annexin V 是检测细胞早期凋亡，JC-1 是检测细胞中期凋亡、Tunel 是检测细胞晚期凋亡。
可能是后期洗涤次数过多，建议减少洗涤次数，或者洗涤动作轻柔一些。
可以。
Annexin V 是检测细胞早期凋亡，JC-1 是检测细胞中期凋亡、Tunel 是检测细胞晚期凋亡。
可以，但是需要制备原生质体，因为植物细胞或是细菌（原核生物）含有细胞壁，具体的染液使用剂量只需浸没细胞即可，染色时间对于不同细胞有一定的不同。
需要，因为 TdT 酶需要经过通透的细胞才能进入细胞内，而 Annexin V 和 JC-1 是不能进行染色固定的。
不需要，对于贴壁细胞，要先用PBS 洗 2-3 次，然后直接用多聚甲醛固定细胞， 通透处理，染色观察。
4℃放置25 min左右，选择4%多聚甲醛作固定液，乙醇、甲醇、酸性固定液，会导致标记效率低；固定时间不宜过长，过长导致交联程度过高，进而降低标记效率。