TechniquesDSS动物建模|溃疡性结肠炎UC模型建立
目前有多种动物模型被广泛用于研究炎症性肠炎(inflammatory bowel disease,IBD)的病因、发病机制及测试新开发药物药效等,尤其以葡聚糖硫酸钠盐(Dextran Sulfate Sodium Salt,DSS MW:36000~50000)结肠炎(ulcerative colitis,UC)模型应用最广

DSS 造模发展历程
目前有多种动物模型被广泛用于研究炎症性肠炎(inflammatory bowel disease,IBD)的病因、发病机制及测试新开发药物药效等,尤其以葡聚糖硫酸钠盐(Dextran Sulfate Sodium Salt,DSSMW:36000~50000)结肠炎(ulcerative colitis,UC)模型应用最广。

图1. DSS溃疡病结肠炎模型发展历程
DSS建构的UC模型特点
通过给予动物自由饮用不同浓度的DSS(MW:36000~50000)水溶液,根据用药时间及用药周期可制成急性和慢性两种结肠炎模型。该模型症状表现与人类UC极为相似,主要表现为腹泻、黏液样便、粪便潜血、肉眼血便、重量减轻、活动度减少,毛色变差等。
表1 DSS结肠炎模型组织学特征
DSS结肠炎模型类别 | 急性期结肠炎模型 | 慢性期结肠炎模型 |
组织学改变 | 结肠充血、水肿、变短、变脆、重量长度比增加 | 结肠明显缩短 |
出现不同程度的结肠溃疡 | 粘膜增厚、淋巴结肿大 | |
黏膜水肿、杯状细胞缺失、隐窝肿胀破坏 | 杯状细胞缺失、隐窝缺失 | |
黏膜和黏膜下层出现不同程度的炎症细胞浸润,上皮细胞损伤 | 小部分动物出现腺瘤性息肉、肿瘤样改变 |
DSS UC模型的优势
1、症状表现与人UC极度相似,可用于研究急、慢性结肠炎的发生发展机制,也可用于药物的药效研究。
2、自由饮用DSS水溶液的建模方式,简单易行,成模率高,重复性强。
3、用不同浓度的DSS、给药时间和给药频率,可以实现急性和慢性两种结肠炎模型。模型持续时间长,体现了急性向慢性转化的动态过程,解决了UC的慢性化和维持问题,这是以前许多模型无法比拟的。
4、多种属动物中均可造模:小鼠、大鼠、斑马鱼、猪、果蝇等。
5、联合氧化偶氮甲烷 (azoxymethane, AOM)用药,可用于诱发结肠炎相关性癌症 (colitis associated cancer, CAC) 动物模型,成功模拟IBD诱发CAC的过程。
DSS UC模型建构实例
1)BALB/c小鼠,雌,6-8周,25 g;
2)用无菌水配置3% DSS饮用水,然后用0.22 μm的滤膜过滤;
3)给小鼠连续饮用7天,HE染色;
4)实验结果:小鼠的组织水肿充血,有明显的炎症现象。

图2 DSS急性结肠炎切片HE染色结果[1]
1)将斑马鱼胚胎培养在含甲基蓝的E3胚胎培养基中,28.5 ℃,培养至1 dpf;
2)用E3培养基配置0.5% DSS饮用水,然后用0.22 μm的滤膜过滤;
3)用0.5%的DSS处理斑马鱼,从3 dpf处理到6 dpf。
4)实验结果:0.5%的DSS药物处理均会导致斑马鱼肝脏颜色变深,产生炎症应激。

图3 DSS导致斑马鱼肝脏产生炎症反应[2]
1)四到五天大的约克郡小猪,实验组:灌注DSS,对照组:灌注生理盐水
2)每只小猪每日摄入量1.25g DSS/kg,灌注5天
3)实验结果:灌注DSS后,实验组的血浆D-甘露醇摄取率显著高于对照组,表明小猪出现了肉眼可见的肠炎症状。

图4 DSS诱导致小猪体内D-甘露醇浓度高于对照组[3]
1)实验组:5~10日的雌果蝇;
2)用5%的蔗糖溶液分别配制含有不同成分的喂食培养基,类别包括各含3%的DSS,25 μg/ml博来霉素;
3)果蝇放入含有层析纸的瓶中,29℃培养三天,期间每天将存活的果蝇移入含有新鲜培养基的空瓶中;
4)实验结果:DSS有致死的功能,且DSS诱导ISC前体细胞增殖。

图5 DSS诱导果蝇中ISC前体细胞增殖[4]
1)实验动物:大鼠,8周龄,200 g;
2)实验步骤:饮用3.5% 浓度的DSS,连续饮用10天,HE染色;
3)实验结果:结肠黏膜异常(案例为文献中摘录)。

图6 健康大鼠和UC大鼠结肠炎切片HE染色结果[5]
1)第1天称重并标记小鼠,实验组小鼠腹腔注射偶氮甲烷 AOM(10 mg/kg);
2)用常规饮用水喂食一周;
3)用2.5%浓度DSS替换饮用水喂食一周;
4)用常规饮用水喂食2周;
5)步骤3和步骤4重复3次。

如何评价造模是否成功?
1、疾病活跃指数评分(Disease Activity Index, DAI score)
从三个方面进行评估打分,分别为体重、粪便粘稠度、粪便潜血等指标,DAI评分为三个指标之和。
表2. DAI评分细则
评分 | 体重下降百分比 | 粪便粘稠度 | 粪便潜血 |
0 | 0 | 正常 | 阴性 |
1 | 1-5% | 软便 | 浅蓝 |
2 | 5-10% | 黏液样便 | 蓝色 |
3 | 10-20% | 稀液状便 | 深蓝 |
4 | >20% | 肉眼血便 |
2、组织学变化评分
组织学变化评分为上述各指标之和,在急性结肠炎模型中淋巴结形成不做评分。组织学分析的标准方法为HE染色(Cat.NO:60524ES60)。
表3.组织学变化评分
评分 | 溃疡(个) | 上皮细胞变化 | 炎症浸润 | 淋巴结(个) |
0 | 0 | 正常 | 无 | 无 |
1 | 1 | 杯状细胞缺失 | 隐窝周围浸润 | 1 |
2 | 2 | 杯状细胞大面积缺失 | 黏膜肌层出现浸润 | 2 |
3 | 3 | 隐窝缺失 | 黏膜肌层普遍浸润,黏膜增厚 | 3 |
4 | >3 | 隐窝大面积缺失或息肉状再生 | 黏膜下层浸润 | >3 |
3、结肠长度
急性结肠炎模型中,第8天可检测到结肠长度缩短;慢性结肠炎模型中,结肠长度缩短更加明显。
4、总结
DSS UC动物模型构建应先进行预实验,摸索建模条件,建议预实验每组样本8-10只,并设立对照组。通常出现体重减轻、稀便、腹泻、血便或粪便潜血、溃疡可视为DSS药物有效,造模成功。
翌圣 DSS 建模实例
翌圣提供高品质DSS(Cat.NO:60316ES,MW:36000~50000),高纯度(>98%),硫含量17-19%,游离硫<0.2%,大量数据文献支持,广泛应用于UC模型的构建。

建模效率与进口产品一致,产品价格低至进口价格的1/3,大量现货库存。
客户1:
客户来源:中国医学科学院北京协和医学院放射医学研究所(天津)
小鼠类型:6~8周雄性C57BL/6J小鼠
造模方法:1.5% (w/v) DSS自由饮用15天

图7 Yeasen DSS(Cat#60316ES)小鼠造模实验结果(Yuan Li, et al. Gut Microbes(2019)789-806. IF=10.245)
客户2:
客户来源:南京农业大学
小鼠类型:体重为 20~22 g的8周龄雄性C57BL/6小鼠
造模方法:3% (w/v) DSS自由饮用7天

图8 Yeasen DSS(Cat#60316ES)小鼠造模实验结果(Xiaona Gao, et al. Journal of Nutritional Biochemistry 83 (2020) 108438. IF=6.048)
客户3:
客户来源:中国海洋大学
小鼠类型:4-5周龄SPF雄性C57BL/6J小鼠
造模方法:3.5% (w/v) DSS自由饮用一周

图9 Yeasen DSS(Cat#60316ES)小鼠造模实验结果(Hao H,et al.Frontiers in Immunology.2021.777147. IF=7.561)
表4. 用DSS构建不同类型的肠炎模型
模型 | 建模样本 | 造模方案 | 造模结果 | 使用评价 |
急性结肠炎 | BALB/c小鼠,雌,6-8周,25 g | 3%-5% DSS连续自由饮用7天 | Day5出现,结肠长度缩短、HE染色,炎症明显 | 成模速度快,用时短。符合急性结肠炎模型特征 |
C57BL/6小鼠,雄,8周,20 g | 3%-5% DSS灌胃,持续给药 | Day5出现,结肠长度缩短、体重下降、便血、拉稀 | 成模率高,用时短。符合急性结肠炎模型特征 | |
慢性结肠炎 | C57BL/6小鼠,雄,8周,22 g | 1-2% DSS灌胃,持续给药 | Day40出现,结肠长度缩短、体重下降、便血、拉稀 | 成模率高。符合慢性结肠炎模型特征 |
结肠癌 | C57BL/6小鼠,雄,8周,21 g | 1%-2% DSS自由饮用5天,持续3周 | 14周 出现,结肠长度缩短、体重下降、HE染色,炎症明显 | 成模率高。符合结肠癌模型特征 |
常见问题
无论急性DSS结肠炎模型还是慢性DSS结肠炎模型,肠炎严重程度与成功与否均与小鼠种属(不同基因背景)、DSS浓度、给药周期等相关。
表5. DSS结肠炎造模常见问题
可能出现的问题 | 可能的原因 | 建议解决办法 |
小鼠致死率高 | DSS浓度太高 | 降低DSS给药浓度 |
小鼠无肠炎症状或低肠炎症状 | DSS浓度太低 | 升高DSS给药浓度;减少循环间隔时间(10-14天) |
同一组小鼠,肠炎症状差异大 | 瓶盖堵塞 | 每天检查小鼠饮水瓶 |
产品订购
热卖产品,建模效率与进口产品一致,产品价格低至进口价格的1/3,大量现货库存。
产品名称 | 货号 | 规格 |
60316ES25 | 25 g | |
60316ES60 | 100 g | |
60316ES76 | 500 g | |
60316ES80 | 1 kg |
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60524ES60 | 2×100 mL | 染色液 | |
60534ES50/60 | 6×50 mL/6×100 mL | 染色液 | |
60317ES25/60 | 25 /100 g | 结肠炎治疗药物 | |
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[2] Lingjun Tong, Haining Hao, Zhe Zhang,et al.Milk-derived extracellular vesicles alleviate ulcerative colitis by regulating the gut immunity and reshaping the gut microbiota[J].Theranostics.2021; 11(17): 8570-8586 IF=11.556
[3] Li, Y., Dong, J., Xiao, H., Zhang, S., Wang, B., Cui, M., & Fan, S. Gut commensal derived-valeric acid protects against radiation injuries. Gut Microbes,.2020 .1–18.IF=10.245
[4] Jingjing Gan, Yuxiao Liu, Lingyu Sun,et al.Orally administrated nucleotide-delivery particles from microfluidics for inflammatory bowel disease treatment[J].Applied Materials Today.2021 Dec;25:101231 IF=10.041
[5] Li B, Du P, Du Y, et al. Luteolin alleviates inflammation and modulates gut microbiota in ulcerative colitis rats[J]. Life Sci. 2021 Mar 15:269:119008.IF=6.1
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[12] Wang S, Huang J, Tan KS, et al.Isosteviol Sodium Ameliorates Dextran Sodium Sulfate-Induced Chronic Colitis through the Regulation of Metabolic Profiling, Macrophage Polarization, and NF-B Pathway[J].Oxidative Medicine and Cellular Longevity. 2022,4636618. IF=5.076
[13] Mengmeng Xu, Ying Kong, Nannan Chen,et al.Identification of Immune-Related Gene Signature and Prediction of CeRNA Network in Active Ulcerative Colitis[J].Frontiers in Immunology.2022; 13: 855645. IF=7.561
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