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After adding antibiotics to mouse splenocytes, the viability decreased significantly. Is this an antibiotic issue?

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Asked by:MarkAntibody6343 2026-04-27 Views 243 4 answers
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N
Nina7490 2026-07-02
我们做脾细胞悬液默认不加青霉素-链霉素,操作污染用无菌流程控制。小鼠脾脏取材相对无菌,只要器械灭菌、超净台提前紫外、耗材一次性,不容易污染。分离后24 h活率70%要区分是死细胞碎片多还是凋亡比例高:Trypan blue染色看背景,Annexin V/PI可看早凋。若碎片多,多半是裂红不彻底或离心损伤;若凋亡高,可能培养基缺血清或细胞过密。可以同时做一组0.5×双抗对照,若活率明显回升,再考虑换抗生素方案。我们不会直接加三抗。
潘
潘大师 2026-09-15
小鼠脾细胞我一般不加双抗,尤其不加链霉素。淋巴细胞对链霉素比较敏感,1%双抗,即100 U/mL青+100 μg/mL链,在24 h里对活率影响可能被操作损伤放大。我们做脾细胞悬液,分离后直接用无抗RPMI/1640加10% FBS、1 mM丙酮酸钠、50 μM β-ME,短期培养没问题。防污染靠一次性器械和规范操作。如果必须加,只在分离洗涤阶段加0.5×,接种后换无抗。活率掉到70%还要排查红细胞裂解液时间、离心转速和细胞密度。
S
Sample 2026-09-23
先做对照确认,别直接归因给双抗。把同一批脾细胞分三组:无抗、0.5×双抗、1×双抗,24 h测活率。我们遇到过1×双抗对脾细胞活率影响不大,掉到70%更多是红细胞裂解过度或培养基pH不对。小鼠脾细胞本身凋亡快,如果离心500 g以上超过10 min,活率会明显下降。我们做T细胞实验一般不用双抗,因为链霉素可能干扰活化。若担心操作污染,可以换庆大霉素50 μg/mL或只加青霉素100 U/mL。两性霉素B更不建议用于淋巴细胞。
孙
孙检测7277 2026-09-22
浓度上如果一定要加,建议半量:50 U/mL青霉素+50 μg/mL链霉素,对应0.5×。这个浓度对大多数小鼠脾细胞24-48 h影响较小。我们做过ELISPOT和流式,半量双抗不影响活率和功能。但长期培养或加刺激剂时,我会完全撤掉抗生素。换更温和抗生素可选庆大霉素,覆盖革兰阴性菌,对淋巴细胞影响相对小。三抗里的两性霉素B对细胞毒性大,不建议加。活率下降还要排除分离过程中的机械损伤:研磨脾脏别太用力,用一次性滤网温和研磨,过70 μm滤网。
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