Case StudiesT4 DNA连接酶(T4 DNA Ligase)实战指南:NGS文库构建中接头连接优化方案
二代测序(NGS)凭借高通量、低成本、高分辨率优势,现已广泛应用于肿瘤液体活检、单细胞基因组分析、病原微生物检测、遗传变异筛查、群体基因组学等科研与临床检测领域。完整 NGS 检测流程分为核酸提取、文库构建、上机测序、数据分析四大环节,文库构建是承上启下的核心步骤,直接决定下机数据质量、有效比对率与突变检出灵敏度。其中接头连接作为文库制备关键节点,连接效果优
二代测序(NGS)凭借高通量、低成本、高分辨率优势,现已广泛应用于肿瘤液体活检、单细胞基因组分析、病原微生物检测、遗传变异筛查、群体基因组学等科研与临床检测领域。完整 NGS 检测流程分为核酸提取、文库构建、上机测序、数据分析四大环节,文库构建是承上启下的核心步骤,直接决定下机数据质量、有效比对率与突变检出灵敏度。其中接头连接作为文库制备关键节点,连接效果优劣会直接影响最终测序产出,是建库流程中不可忽视的关键环节。
标准 NGS 建库流程:DNA 片段化→末端修复 + 加 A 尾→接头连接→PCR 富集。
接头连接依靠 T4 DNA 连接酶将测序接头共价结合至 DNA 片段两端,赋予文库分子与测序芯片结合、扩增的能力。Illumina、MGI 两大主流平台接头结构存在差异,但二者连接反应均依赖 T4 DNA Ligase 催化完成。

图1. DNA建库流程示意图
T4 DNA 连接酶以 ATP 为辅因子,催化 DNA 5’磷酸端与 3’羟基端形成磷酸二酯键;建库场景中主要负责完成 dA 尾 DNA 与 dT 尾测序接头的 TA 粘性末端连接。
翌圣 Premium T4 DNA Ligase(14966ES)针对 NGS 建库场景专项优化,核心优势:
- 超凡热稳定性:42℃处理 4 小时仍保持 60% 以上酶活残留,在较宽温度区间内持续发挥高效酶活,无论是高温反应场景,还是高通量实验室温预装体系、多步实验室温衔接等复杂场景,都能稳定适配,无需担忧酶活衰减。
- 超低接头自连率:0.5 ng gDNA 建库实验中,接头自连率显著优于竞品,尤其适配肿瘤活检、单细胞测序、cfDNA 等微量样本建库,既能避免珍贵样本与接头浪费,又能减少无效序列干扰,保障数据真实性与精准度。
标准化接头连接操作方案
1、100 μL 标准连接反应体系:
组分 | 体积(μL) |
dA-tailed DNA | 60 |
10× T4 DNA Ligase Buffer | 10 |
50% PEG6000 * | 10 |
DNA Adapter ** | x |
Premium T4 DNA Ligase (400 U/μL) *** | 1-5 |
ddH₂O | To 100 |
【注】* 试剂盒内未提供50% PEG6000,需自行准备。
** 接头用量根据Input DNA量参考下表。
*** Premium T4 DNA Ligase用量可根据需要添加1-5 μL。
2、接头用量参考
接头质量和使用浓度直接影响连接效率及文库产量。下表为不同Input DNA量推荐的Adapter使用比例:
Input DNA | Adapter : Input DNA 摩尔比 |
1 μg | 10:1 |
500 ng | 20:1 |
250 ng | 40:1 |
100 ng | 100:1 |
50 ng | 100:1 |
25 ng | 200:1 |
1 ng | 200:1 |
500 pg | 400:1 |
【注】:Input DNA摩尔数(pmol)≈ Input DNA质量(ng)/ [0.66 × Input DNA平均长度(bp)]。
【接头添加计算举例】:当Input DNA为100 ng,Input DNA长度为300 bp时,接头应该添加多少?
第一步,计算Input DNA摩尔数。公式:Input DNA摩尔数(pmol)≈ Input DNA质量(ng)/ [0.66 × Input DNA平均长度(bp)];
Input DNA摩尔数(pmol)=100 ÷(0.66×300)=0.5 pmol;
第二步,计算接头添加摩尔数。根据表2查询接头添加比例;
根据表2,查得Input DNA 100ng时接头添加比例100:1,则接头添加摩尔数=100×0.5 pmol=50 pmol;
第三步,计算接头添加体积。接头浓度=15 μmol/L(如使用其他接头,浓度需要依据其他接头浓度参数);
接头添加体积=接头添加摩尔数(50 pmol)÷接头浓度(15 μmol/L)=3.34 μL(注:15 μmol/L=15 pmol/μL);
综上,接头可添加3.4 μL。(注:接头最大加入体积不超过5 μL)。
3、 反应操作步骤
① 按上述体系表,依次加入各组分,配制反应体系。
② 涡旋混匀,低速离心使粘附在管壁上的液体沉降至管底。
③ 置于PCR仪中,20°C孵育15分钟。
④ 反应完成后,使用磁珠或PCR纯化柱进行产物纯化,去除接头二聚体和未连接接头。
4、注意事项
· 缓冲液(10× T4 DNA Ligase Buffer)在融解时如出现少量沉淀,属正常现象,请颠倒混匀后使用,不影响性能。
· 接头投入量是影响自连率和连接效率的核心变量——接头过多易产生大量Adapter Dimer,接头过少则连接效率不足。建议严格按接头用量参考表添加。
· 50% PEG6000 不可省略;若后续电转感受态,连接产物必须纯化。
FAQ
Q1:500 pg 微量 DNA 连接后文库产量低怎么办?
A1:接头摩尔比调至 400:1,酶添加 5 μL 上限;完整添加 PEG6000,可延长孵育至 20–30 min,磁珠分选保留短片段。
Q2:测序接头二聚体占比过高如何改善?
A2:减少接头添加量,严格遵循摩尔配比;反应结束后必须磁珠纯化去除游离接头。
Q3:是否兼容 Illumina 与 MGI 两种测序平台接头?
A3:完全兼容,针对 Y 型、泡状特殊接头均有稳定连接效果。
Q4:自动化预装室温放置半小时会不会失活?
A4:本品热稳定性经过优化,室温放置 30–60 min 后建库产量无明显衰减,适配批量自动化操作。
相关产品推荐
产品名称 | 货号 | 规格 |
DNA建库酶原料 | 14458ES | |
14460ES | ||
12901ES | ||
12902ES | ||
14966ES | ||
RNA建库酶原料 | 14604ES | |
12903ES | ||
12906ES | ||
10302ES |
Not listed yet IMG Hieff® Taq DNA ligase (40 U/µL)
Not listed yet IMG AmpTherm DNA Ligase (40 U/µL) AmpTherm ...
Not listed yet IMG 10× T4 DNA Ligase Buffer
Not listed yet IMG E.coli DNA Ligase E.coli DNA连接酶 (60 U/µL...
Not listed yet IMG Taq DNA Ligase Taq DNA 连接酶
Not listed yet IMG Hieff® Gold T4 DNA Ligase (5 U/µL)
Not listed yet IMG Novel T4 DNA ligase (400 U/µL)
Not listed yet IMG Hieff® 5'App T4 DNA ligase 5'App T4 DNA连...
Not listed yet IMG PBCV DNA ligase PBCV DNA连接酶 (25 U/µL)
Not listed yet IMG T3 DNA Ligase T3 DNA连接酶(3000 U/μL)
Not listed yet IMG Premium T4 DNA Ligase Premium T4 DNA连接酶(...
Not listed yet IMG HiFi Taq DNA Ligase
Not listed yet IMG HiSalt T4 DNA Ligase 耐盐T4 DNA连接酶 (400 U/...
Not listed yet IMG T7 DNA Ligase T7 DNA连接酶 (3000 U/μL)
Not listed yet