Applications多重PCR技术要点全解析(含详细优化方案)
多重PCR技术要点全解析(含详细优化方案)
多重PCR(multiplex Polymerase Chain Reaction,mPCR)也称复合PCR,由Chambehian'于1988年首次提出。其基本原理与常规PCR相同,区别在于多重PCR反应体系加入一对以上引物,各对引物分别结合在模板相对应部位,最终扩增出一条以上目的DNA片段(图1)。

图1. 多重PCR原理
多重PCR可以通过优化反应体系和反应条件提高扩增的片段数量。理论上只要PCR扩增的条件合适,引物对的数量可以不限。另外,多重PCR在引物和反应条件的设计方面表现出很大的灵活性,既有单个PCR的特异性和敏感性,又较之快捷和经济,自提出以来已被广泛应用于包括核酸诊断在内的诸多领域(图2)。

图2 . 多重PCR的应用
需要指出的是多重PCR实验并不是简单地将多对特异性引物混合成一个反应体系。多重PCR之所以难,在于多个靶点之间扩增条件不兼容,每个靶点都需要旁边其他的引物配合。举个例子,就像“绑腿赛跑”(图3)。

图3. 绑腿赛跑
每个靶点的成功扩增都需要被捆绑在一起的两个人(一对引物)配合默契。而多重PCR就需要多对选手同时起跑又同时到达,并且所有参赛的每对选手都有最好的,而且均衡的发挥。
因此,多重PCR实际操作过程中的扩增效果和实际扩增的片段数目往往不尽如人意。而为了达到更好的扩增效果,一般我们可以通过以下几个方面进行优化:
2.1 引物
多重PCR实验中要求加入的多对引物既不能互相结合,也不能与模板DNA上目标片段以外的区域结合。另外传统的多重PCR实验中,为了使结果便于凝胶检测,还需设计不同扩增子片段大小不一。更麻烦的是,多重PCR中的不同扩增片段还会互相竞争资源,其结果是高丰度模板能够被很容易的检测到,而低丰度的模板彻底沦为背景。因而引物设计除了遵循一般的规则之外,还需要注意以下几点:
a. 引物特异性:
各引物与其它扩增片段不能存在较大的互补性,扩增片段之间也不能有较大同源性;
b. 引物长度:
一般18-24碱基,各引物之间不能互补,尤其避免3’端互补。较长的引物更易形成二聚体;
c. 退火温度:
退火温度选择标准:提高每一对引物的退火温度,然后在mPCR的时候采取最低退火温度;
d. 引物结构设计:
通过一些独特的结构设计,避免非特异性扩增或者引物二聚体。比如Ω引物(如图3),该引物包括三部分,5’端的序列,Ω环,3’端序列。其中两端的序列是和目标区域互补的,而环不是。对于Ω引物,当5端和3端序列完全配对才可以进行目标区段扩增,否则其结构不稳定(因为Ω环存在),导致扩增失败。
常用引物设计网址:
http://www.premierbiosoft.com/primerplex/index.html
http://people.ds.cam.ac.uk/ssb22/pooler/(only for cancer researchers)
2.2 反应体系
多重PCR的反应体系也是影响扩增效果的重要因素之一,体系中的各组分需满足每对引物对应的靶点的扩增量的要求。反应体系包括引物、模板、缓冲液、DNA聚合酶、dNTP和Mg2+等,其作用与优化方法如下表1所示。
反应体系 | 影响 | 优化 |
引物浓度 | 多重PCR体系中,就越多,片段越短引物用量和扩增的目的片段长度有着正比内在关系,即扩增片段越长,所需引物相对就越多。同时引物间易相互影响导致扩增效果不佳。 | 一般每种引物浓度E0 2μM左右,如果扩增效果不佳可增加弱引物得量减少强引物的量,不同基因引物相对浓度有较大差异(0.05-0.4μM)。 理论 上,引物与靶序列的摩尔比为103:1。 |
模板浓度 | 模板DNA浓度过高导致非特异性扩增,并且DNA有高级结构,浓度过高影响与引物的退火。 | 哺乳动物基因组DNA 100ng/ml;酵母基因组DNA 1g/ml;细菌基因组DNA0.1ng/ml;质粒DNA 1~5ng/ml。 |
dNTP和Mg2+浓度 | dNTP能够结合镁离子,而DNA聚合酶发挥活性需要游离的镁离子。所以二者之间浓度需要平衡。 | 一般情况下200 μM 的dNTP要得到较好的扩增结果需要Mg2+浓度为1.5~2 mM。 |
PCR缓冲液 | 高盐浓度会使长片段的扩增产物难于变性解链。因而长片段产物在低盐浓度下扩增效果较好,而短片段产物在高盐浓度下扩增效果较好。 | 提高PCR缓冲液浓度,或者提高K+浓度至70-100mM。 |
DNA聚合酶 | 聚合酶量过低造成扩增产量的降低,过高导致基因扩增不平衡以及以背景的轻微增高。 | DNA聚合酶的最适浓度为每25 μL反应体积中2U,实际根据扩增效果进行轻微调整。 |
表1. 反应体系的优化
注:本文中DNA聚合酶以Taq DNA聚合酶为例。具体实验中,还可以在反应体系中适当增加浓度为5%的DMSO或者5% 的甘油等辅助剂,有利于提高扩增效率以及特异性。
2.3 反应条件
多重PCR反应中会存在以下两种问题:1)目的产物长度不尽相同,而较小片段总是优先得到扩增;2)各对引物的最佳PCR条件也不尽相同,比如较长片段需要更长的延伸时间。因此为了保证最终扩增产物的量尽可能的一致,在优化反应条件的时候,尽可能选择有利于较大片段扩增的条件,见表2。
表2. 反应条件的优化
反应条件 | 影响 | 优化 |
复性温度 | 复性温度影响产物的特异性,提升复性温度会使产物更加特异,但过高会导致目的基因无法扩增。 | 先计算单个引物的熔解温度(Tm),在此基础上推算复性温度T0(T0=Tm-5),实验时采用所有引物最低的复性温度。 |
延伸温度 | 延伸温度高会减少某些基因的扩增,即使延长退火时间和延伸时间也可能无法消除这种影响。 | 一般65-72℃,根据实验结果进行适当调整。 |
延伸时间 | 多重PCR中,由于同时扩增多个基因,酶和dNTP的缺乏就成为限制因素,就需要更多的时间来完成所有产物的合成。多重PCR中增加延伸时间,可以增加较长PCR产物的量。 | 根据目的片段的大小以及DNA聚合酶的扩增效率确定延伸时间。 |
循环数 | 循环数过低影响目标基因的产量,过高对于产量无明显影响 | PCR产物量增加最明显的是在25个循环附近,通常28-30个循环即可 |
3. 常见问题解决办法
多重PCR扩增的时候主要的问题:二聚体、非特异性扩增以及扩增产物条带较弱。
表3. 常见问题解决办法
常见问题 | 建议 | |
引物二聚体 | a.重新设计引物,最根本的解决办法 | |
b.重新优化反应条件如提高退火温度 | ||
c.重新优化反应体系如适当提高模板浓度,降低引物浓度 | ||
d.提高退火温度 | ||
产物条带弱 | 所有条带 | a.增加延伸时间 |
b.降低延伸温度至62-68℃ | ||
c.逐步降低退火温度 | ||
d.适当提高DNA聚合酶浓度 | ||
短片段产物 | a.提升缓冲液浓度 | |
b.降低退火或者延伸温度 | ||
c.增加弱条带的相对引物量 | ||
长片段产物 | a.增加延伸时间 | |
b.提高退火/延伸温度 | ||
c.增加弱条带的相对引物量 | ||
d.保持Mg2+浓度不变,降低缓冲液浓度 | ||
非特异性扩增 | a.若非特异性片段为长片段,则增加反应缓冲液浓度;若是短片段,降低缓冲液浓度 | |
b.逐渐提高退火温度 | ||
c.降低模板和DNA聚合酶用量 | ||
d.保持dNTP浓度不变,增加Mg2+浓度 | ||
多重PCR要求在同一反应体系内对多个位点进行特异性扩增。因而引物间的配对与竞争性扩增均会影响扩增效果。如果能选择合适的反应体系以及反应条件则有望提高多重PCR的扩增效果。所以在进行多重PCR的时候,不应墨守陈规,要根据自身实验情况对实验条件进行不断优化,达到最佳扩增效果。
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