ApplicationsAnti-Flag亲和纯化凝胶产品升级-flag标签蛋白纯化更高效
Anti-Flag亲和纯化凝胶(20584ES)由高质量的鼠源IgG2b单克隆抗体与4%高度交联的琼脂糖凝胶通过供价偶联制备,本产品具有较高的Flag标签融合蛋白加载容量(至少为1.1 mg protein/mL凝胶),杂蛋白非特异结合少,可用于带有Flag标签的融合蛋白免疫沉淀(IP)和纯化。
Anti-Flag亲和纯化凝胶(20584ES)由高质量的鼠源IgG2b单克隆抗体与4%高度交联的琼脂糖凝胶通过供价偶联制备,本产品具有较高的Flag标签融合蛋白加载容量(至少为1.1 mg protein/mL凝胶),杂蛋白非特异结合少,可用于带有Flag标签的融合蛋白免疫沉淀(IP)和纯化。
高特异性:选用高质量的鼠源IgG2b单克隆抗体,能够特异性吸附Flag蛋白序列。 高收率,高纯度:得到高纯度的Flag标签蛋白 高结合载量:载量≥1.1mg蛋白/mL凝胶 结合蛋白类型多:Met-FLAG-Protein,N端FLAG-Protein,C端FLAG-Protein 用途广泛:可用于蛋白质纯化或COIP
翌圣目前拥有2种Anti-Flag亲和纯化凝胶,各具特色,能够完全满足用户flag标签蛋白纯化的应用需求。
名称 | Anti-DYKDDDDK (Flag) Affinity Gel(Anti-Flag亲和纯化凝胶) | |
货号 | ||
基质 | 4%高度交联的琼脂糖 | 4%的琼脂糖 |
配基 | 1A3 | 1.00E+06 |
蛋白结合 | ≥1.1 mg蛋白/mL凝胶 | ≥1.1 mg蛋白/mL凝胶 |
应用 | 蛋白纯化,免疫沉淀(IP) | 蛋白纯化,免疫沉淀(IP) |
选择指南 | 更适合碱洗脱和酸洗脱 | 更适合多肽况争洗脱和酸洗 |
1.Anti-Flag亲和纯化凝胶(20584ES)纯化原核表达的Met修饰的N端Flag融合蛋白,N端Flag融合蛋白,C端Flag融合蛋白。

图1.Yeasen Anti-Flag亲和纯化凝胶纯化结果跑胶图
a:Flag-N b:Flag-M c:Flag-C
M:蛋白Marker;1:发酵菌破碎上清原液;2:发酵菌破碎上清柱后穿透;3:洗脱(pH2.7洗脱1);4:洗脱(pH2.7洗脱2);5:洗脱(pH2.7洗脱3);6:洗脱(pH2.7洗脱4);7:纯化后凝胶(pH2.7洗脱);8:洗脱(pH12洗脱1);9:洗脱(pH12洗脱2);10:洗脱(pH12洗脱3);11:洗脱(pH12洗脱4);12:纯化后凝胶(pH12洗脱)
2.Anti-Flag亲和纯化凝胶(20584ES)变性剂兼容性测试,在下表中测试耐受浓度以内对纯化几乎无影响。
试剂 | 测试耐受浓度 | 注解 |
EDTA | 5 mM | 螯合剂浓度越高,纯化效率越低,目标蛋白回收率越低。 |
β-巯基乙醇 | 100 mM | 还原剂将破坏填料上抗体中的二硫键。在纯化过程中避免使用还原剂或保持低浓度(<10mM)。当还原剂达到此处提到的最大耐受浓度时,SDS-PAGE分析中将出现抗体重链条带(~50 kDa)。如果样品中含有高浓度的还原试剂,则填料不能重复使用。 |
DTT | 80 mM | |
Tween 20 | 5% | 洗涤剂的浓度不得超过5%。 |
Triton X-100 | 5% | |
盐酸胍 | 0.3 M | 离液剂将使DYKDDDDK-标记的靶蛋白变性。不超过0.3 M盐酸或1.5 M尿素。 |
尿素 | 1.5 M | |
NaCl | 0.5 M | 浓度越高,纯化效率越低,目标蛋白回收率越低。 |
3.翌圣Anti-Flag亲和纯化凝胶(20584ES)与国外进口品牌S*纯化对比测试。

图2.Yeasen(a) PK进口品牌S*(b)Anti-Flag凝胶对比测试跑胶图
M:蛋白Marker;1:Flag-N蛋白柱前原液;2:Flag-N蛋白柱后穿透;3:洗脱(pH2.7洗脱);4:洗脱(pH12洗脱);5:洗脱(0.1 mg/ml 3×Flag多肽洗脱);6:洗脱(0.5 mg/ml 3×Flag多肽洗脱)

图3.Yeasen(a) PK进口品牌S*(b)Anti-Flag凝胶每ml凝胶纯化蛋白得率对比测试结果
问题 | 可能原因 | 推荐解决方案 |
柱子反压过高 | 填料被堵塞 | 清洗树脂。 |
裂解液中含有微小的固体颗粒,建议上样前最好用0.22μm或0.45μm滤膜过滤,或离心去除。 | ||
样品太粘稠 | 样品中含高浓度的核酸,延长破碎时间直至粘度降低,或添加DNaseI(终浓度为5μg/ml),Mg2+(终浓度1mM),冰上孵育10-15min | |
缓冲液太粘稠 | 有机试剂或蛋白稳定试剂(如甘油等)可能会引起反压增高,降低操作流速。 | |
洗脱组分中无目的蛋白 | Flag标签蛋白变性了 | 过度的裂解使目的蛋白变性使用温和的裂解条件,实验条件以经验为准。 |
洗脱方式不合适 | 优先选择酸洗或碱洗 | |
目的蛋白聚集产生沉淀 | 在细胞裂解前溶液中加入DTT,终浓度为1-10mM | |
融合蛋白改变了Flag的构象,影响了目的蛋白的结合力 | 测定pGEX中Flag的结合力,对载体进行超声处理,检测其结合力。如果载体中Flag有很高的亲和力,有可能是改变融合蛋白的构象从而降低了Flag标签蛋白的亲和力。 | |
降低结合温度至4℃,充分清洗。 | ||
目的蛋白没有完全洗脱下来 | 洗脱体积太少 | 增加洗脱液体积,减小洗脱流速。 |
洗脱液中Gly-HCl的pH发生改变 | 使用新鲜配制的洗脱液 | |
洗脱液孵育时间不够 | 增加洗脱液与凝胶的孵育时间 | |
电泳或western blot检测中发现多条带 | Flag融合蛋白已经发生降解 | 在裂解液中加入蛋白酶抑制剂,如加入1 mM PMSF |
可能是蛋白酶对目的蛋白部分降解造成的,可使用蛋白酶缺陷型宿主菌(如lon-或ompT) | ||
细胞破碎过度 | 减少细胞破碎时间,超声前加入溶菌酶(菌液体积的0.1倍10mg/ml溶菌酶,25mM Tris-HCl,pH8.0),避免发泡导致蛋白酶变性,过度超声破碎增加宿主内源蛋白与Flag融合后的蛋白的共纯化。 | |
抗体与E. coli的各种蛋白反应 | 抗体吸附E.coli蛋白:Flag-抗体;超声处理去除Flag抗体,可以用于Western Blot检测 |
产品名称 | 产品编号 | 规格(mL) |
20584ES03/08/25/60 | 1/5/25/100 | |
20585ES03/08/25/60 | 1/5/25/100 | |
20586ES03/08/25/60 | 1/5/25/100 | |
20587ES03/08/25/60 | 1/5/25/100 | |
20588ES03/08/25/60 | 1/5/25/100 | |
20589ES03/08/25/60 | 1/5/25/100 | |
20564ES03/08 | 1/5 | |
20565ES03/08 | 1/5 | |
20566ES03/08 | 1/5 | |
20567ES03/08 | 1/5 |
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