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Q:这种NHS聚合物的磁珠和NHS琼脂糖的磁珠的区别?
A:两者都是表面为NHS基团修饰的磁珠,能够与氨基的蛋白和其他分子形成稳定的肽键,用于亲和纯化或者分析检测抗体、抗原和其他生物分子。聚合物的磁珠一般粒径较小,为1-2μm,主要用于分析检测领域(如体外诊断、微生物检测、免疫沉淀、免疫共沉淀等);而NHS琼脂糖磁珠是以天然的亲水性高分子琼脂糖为基材的多孔微球,粒径为30~100μm,主要用于分离纯化领域(如蛋白分离纯化、抗体分离纯化)。
Q:磁性微球可以反复使用吗?
A:偶联配体后可以反复使用。但不能更换配体。
Q:为什么储存温度是-20℃,偶联配体后保存温度又是2-8℃?
A:未使用的产品保护液是异丙醇,可以在-20℃中保存不结冰,偶联蛋白后为考虑蛋白稳定性且反复冻融影响填料性能,选择2-8℃保存。
Q:样品浓度达不到5mg/ml,一般卖的抗体是1mg/ml,可以吗?0.2mg/ml的抗体也可以偶联吗?
A:1mg/ml的浓度也是可以偶联的。0.2mg/ml浓度有点低,看下是否能超滤浓缩,低浓度样品的偶联效率无法作保证。推荐用于偶联的抗体浓度>1mg/ml。
Q:NHS预活化磁珠的这个清洗液1的PH能改吗,一定要PH为3吗?
A:也可以用0.1M 甘氨酸,ph3.0作为清洗液。一般选择这个条件是模拟抗体纯化洗脱液的条件,先进行几次清洗 将结合力弱的蛋白去除,避免后续使用过程中的配体脱落。
Q:在文库的接头上偶连氨基后,是否能和NHS磁珠进行共价结合呢?有偶联方法吗?
A:这个理论上是可行的,关于这方面的应用我们暂时没有数据积累。这个与说明书中蛋白偶联步骤基本一致。样品需在不含伯氨基的离子缓冲液中,磁珠按照说明书中清洗步骤先用稀盐酸清洗然后用偶联液清洗,清洗结束后立即与样品混合接触,28℃偶联4h左右。样品浓度要求以及单位体积磁珠偶联的量,暂无数据。
Q:客户做的是蛋白质组学,蛋白溶液里会含有DNA,RNA,会干扰蛋白吸附吗?含核酸样品的偶联中 如何消除核酸样品的干扰?
A:不能这样操作的,DNA,RNA会有干扰。一般我们只用于纯品的偶联;如果是在NHS磁珠上先固定这蛋白对应的抗体,然后通过抗体结合蛋白, 可以去除多余的核酸。
Q:清洗液1:0.1 M乙酸-乙酸钠,0.5 M NaCI, pH3.0和清洗液 2:0.1 M Tris-HCI, 0.5 M NaCI, pH8.0,这两个清洗液只使用一个可以吗?
A:不可以,这个是模拟纯化条件的平衡和洗脱
Q:1mM Hcl或者欧联液清洗的目的?活化磁珠?2,如果加入PEG和nacl,磁珠是还有可能和蛋白偶联?
A:稀盐酸是清洗去除磁珠保护液。PEG和氯化钠理论不影响NHS偶联。
Q:清洗液1怎么配制?
A:是配0.1M的乙酸钠和0.5M的氯化钠,再用乙酸调PH定容。
Q:用于偶联的抗体对抗体储存液有要求吗?
A:保存液中不能有tris体系,高浓度甘油,叠氮化钠等组分。
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